對于植物的三倍體乃至多倍體,我們都不陌生。
中學生物課本上介紹了商品三倍體無籽西瓜的培育過程,先用秋水仙素處理獲得四倍體母本,繼而與二倍體父本雜交得到不育的三倍體后代,就是大家鐘愛的大口爽吃不用吐籽的無籽瓜了。
(無籽西瓜的培育過程示意圖)
我們平時吃的香蕉也是三倍體,是其野生祖先“小果野蕉”在自然條件下偶然形成的。小果野蕉既可以無性繁殖也可以開花結種子進行有性繁殖,人類便利用了這一點,通過無性繁殖的手段將野生的三倍體保留下來,最終得到了香甜可口又沒有一大堆硬籽的香蕉。

當然,除了三倍體,體細胞中有更多套染色體的生物也是有的。
我國最重要的糧食作物之一小麥,其祖先就是在大約50萬年前與山羊草屬的植物發生天然雜交,成為了四倍體,到了距今約8000年前,四倍體小麥又與另一種野生“親戚”發生了天然雜交,最終形成了六倍體的后代,也就是目前世界范圍內廣為栽培的普通小麥。
(高中生物教材中的六倍體普通小麥來源簡圖)
但是動物的多倍體,似乎就比植物的要稀罕得多了。
近年來,隨著三倍體轉基因三文魚先后在加拿大和美國通過批準上市,以及個大味美的三倍體牡蠣(生蠔)在網絡上熱銷,動物的三倍體養殖技術也逐漸進入了大眾的視野。
人們培育三倍體水果主要是為了得到無籽的果實,培育三倍體動物是為了什么?
三文魚和牡蠣都是雌雄異體、異體受精的動物,不可能像香蕉一樣進行無性繁殖,那么,三倍體的動物是怎么培育的呢?

三倍體動物的培育歷史
由于高等動物幾乎不可能無性繁殖,那些偶然產生的三倍體動物,難以被保留下來。因此,人們無法像當初培育香蕉一樣,從自然界獲得三倍體的高等動物。現在被成功規模化養殖的三倍體動物,都是通過各種手段人工誘導得到的,這也就注定了人工培育三倍體動物不會有太長的歷史。
在1932年,德國科學家Fabius Gross通過對剛受精的卵細胞施以低溫,成功誘導一種名為Artemia salina的甲殼綱動物產生了三倍體后代[1]。隨后,同樣的方法被科學家們嘗試用于蠑螈[2]、鮭魚[3],甚至小鼠[4]。
1959年,牛津大學的印度籍科學家Har Swarup成功人工誘導得到了三倍體的三棘刺魚(一種小型近海硬骨魚類)[5]。之后,又經過幾十年的探索和研究,獲得三倍體動物的方式逐漸增加,人們也終于成功地在鯉魚、鰱魚、鳙魚、鯽魚、虹鱒、大黃魚、真鯛、黑鯛、團頭魴、牙鲆、羅非魚等多種魚類的育種中獲得三倍體和/或四倍體[6-9]。
(三棘刺魚)
而貝類的三倍體研究則是從上世紀80年代開始逐漸成為熱門的,1981年,幾位美國科學家采用化學誘導的方法成功獲得了三倍體美洲牡蠣。現在,人們已經在長牡蠣、悉尼巖牡蠣、僧帽牡蠣以及市場上最常見的太平洋牡蠣等多種牡蠣,以及海灣扇貝、硬殼蛤、皺紋盤鮑、雜色鮑等貝類的三倍體育種上取得了成功[11-13]。
(皺紋盤鮑)
目前,動物的三倍體育種技術仍然主要在水產養殖和觀賞魚領域開展。
為什么要培育三倍體動物?
首先,正常的二倍體動物在性成熟階段和繁殖季節,都會把許多能量用于性腺發育和產生精卵,有些動物在繁殖期死亡率也會有所上升。而三倍體動物由于具有不育的特性,性腺將不會發育成熟,用于性腺發育的這部分能量將被節約下來用于生長。這樣一來,三倍體動物往往生長速度更快、個頭更大,也避免了繁殖期生長停滯、肉質下降和死亡率升高的問題出現,具有極高的經濟價值[14, 15]。
(三倍體牡蠣個頭更大)


(同齡的三倍體三文魚個體顯著大于二倍體三文魚)
另一方面,水產養殖往往依賴海洋、湖泊等自然水體,所養殖的動物是人工培育的雜交種或引入的外來物種。一旦發生圍欄損壞、洪水倒灌等情況,導致養殖個體逃逸進入自然環境,就會污染本土物種的基因庫,或形成新的種群與野生的本土物種競爭,對生態環境造成惡劣的影響。三倍體養殖技術很好地解決了這一問題,養殖個體即使逃逸也不具有繁殖能力,不會污染基因庫,也不會產生大量后代與本土物種爭奪生存資源。
(作為經濟物種被引入,卻變成令人頭疼的入侵物種的褐云瑪瑙螺,俗稱非洲大蝸牛)
最后,人們可以通過種間雜交來獲得兼具兩個物種優勢的雜交品種,但有些雜交二倍體的生存率非常低,但雜交三倍體由于具有某一方親本的兩套染色體,生存能力顯著提高。在這種情況下,就可以通過誘導雜交三倍體,來得到品質優良的雜交養殖品種。
三倍體動物是怎么培育出來的?
人們掌握的獲得三倍體動物的方法有很多,雖然操作起來比較麻煩,具備一定的專業性,但其原理卻并不復雜。
最直接的辦法是遠緣雜交,早在1965年,就有科學家發現了脊椎動物可以通過雜交產生三倍體后代[16]。目前,人們已經成功通過草魚×鳙魚、鯽魚×鯉魚、團頭魴×鯽魚等組合獲得了三倍體或四倍體的魚。

物理學方法是在魚類三倍體育種中應用最為廣泛的,主要包括冷休克、熱休克和靜水壓休克[7, 8]。
在魚類卵細胞的正常形成過程中,初級卵母細胞的染色體復制成四套后,需要進行兩次減數分裂。第一次有絲分裂時,形成一個大的次級卵母細胞和一個小的第一極體,各有兩套染色體。隨后第一極體被排出,魚卵中余下的染色體仍是兩套。第二次成熟分裂停留在分裂中期,雄魚排出的精子進入魚卵后,可激活魚卵繼續完成分裂,排出含有一套染色體的第二極體,最后剩下一套來自雌魚的染色體和一套來自雄魚的染色體。
如果在減數分裂過程中調節水溫或水壓,只要起始時間、持續時間和處理強度掌握得當,就有可能干擾正常的分裂,導致第二極體不排出或染色體重復加倍,最終獲得三倍體或四倍體魚[15]。

化學藥物處理也同樣能干擾減數分裂過程,就像秋水仙素誘導西瓜產生四倍體一樣。一些化學藥物例如咖啡因,可以破壞細胞中的紡錘絲,使得核分裂被中止;還有一些藥物例如細胞松弛素B,能阻礙細胞表層收縮環、溝的形成,導致細胞質無法正常分裂[10]。
在貝類的三倍體育種中,高溫結合咖啡因、細胞松弛素B、6-二甲氨基嘌呤等化學藥物處理,是常用的誘導方法。
當然,就像吃了無籽西瓜、香蕉并不會導致人體患病或不孕不育一樣,經過充分研究、測試,最終得以通過檢測的三倍體魚類和貝類,對人體健康也沒有危害,它們的安全性絕不比傳統的二倍體魚和貝類差。否則,三倍體轉基因三文魚也不會通過挑剔的美國食品藥品監督管理局(FDA)的重重檢測,最終進入美國零售市場啦!

【參考文獻】
1. Gross F. Untersuchungen über die Polyploidie und die Variabilitat bei Artemia salina. Natur-wissenschaften.1932. 20: pp. 962–7. (in German)
2. Fankhauser G, Griffiths RB. Induction of Triploidy and Haploidy in the Newt, Triturus Viridescens, by Cold Treatmentof Unsegmented Eggs. Proc Natl Acad Sci USA. 1939 May; 25(5):233-8.
3. Svardson G. Chromosome studies on Salmonidae. American Naturalist. 1945. 119 (119): 329-36.
4. Beatly RA, Fishchberg M. Spontaneous and induced triploidy in pre-implantation mouse eggs. Nature. 1949 May. 163(4151): 807.
5. Swarup H. Production of triploidy in gasterosteus aculeatus(L). Journal of Genetics. 1959. 56(2):129-42.
6. 樓允東. 魚類育種學. 北京:中國農業出版社, 1999.
7. Hong Y. Tetraploidy induced by heat shock in bighead carp, Aristichthys nobilis. Acta Zool Sin. 1990. 36: 70-5.
8. Don J, Avtalion RR. Comparative study on the induction of triploidy in tilapias, using cold- and heat-shock techniques. Journal of Fish Biology, 2010, 32(5):665-72.
9. Zou S, Li S, Cai W, et al. Establishment of fertile tetraploid population of blunt snout bream (Megalobrama amblycephala). Aquaculture. 2004. 238(1): 155-64.
10. Stanley JG, Allen Jr. SK, Hidu H. Polyploidy induced in the American oyster, Crassostrea virginica, with cytochalasin B. Aquaculture. 1981 Apr. 23(1-4): 1-10.
11. Yamamoto S, Sugawara Y, Nomura T. Induced triploidy in Pacific oyster, Crassosyrea gigas, and performance of triploid larvae. Tohoku Journal Agric Res. 1988. 39: 47-59.
12. Gendreau S, Grizel H. Induced triploidy and tetraploidy in the European flat oyster, Ostrea edulis L. Aquaculture. 1990 Nov.90(3-4): 229-38.
13. El-Wazzan E, Scarpa J. Improving triploidy induction in the hard clam Mercenaria mercenaria notata: cytological evaluation of fertilized eggs. Egyptian Journal of Aquatic Research. 2009. 35(3): 385-403.
14. Taberini CL. Induced triploidy in the bay scallop, Argopecten irradians, and its effects on growth and gametogenesis. Aquaculture. 1984 Nov. 42(2): 151-60.
15. Stanley JG, Hidu H, Allen Jr. SK. Growth of American oysters increased by polyploidy induced by blocking meiosisⅠbut not meiosis Ⅱ. Aquaculture. 1984 Mar. 37(2): 147-55.
16. Rasch EM, Darnell RM, Kallman KD, Abramoff P. Cytophotometric evidence for triploidy in hybrids of the gynogenetic fish, Poecilia formosa. J Exp Zool. 2010.160(2):155-69.
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